L’infrastructure est composée d’un tomodensitomètre Siemens SOMATOM Definition AS+ 128, d’une unité de traitement et de stockage des données, d’un laboratoire de sédimentologie et d’appareils d’hydraulique, de biosédimentologie et d’hydrologie. L’ampleur de cette infrastructure est unique au Canada et dans une classe à part au niveau mondial.
Le laboratoire MiCEL se spécialise dans l’analyse moléculaire et métagénomique des communautés microbiennes présentes dans les infrastructures de gestion de l’eau.
Le laboratoire est capable de performer différentes analyses utilisant l’ADN et l’ARN présent dans les échantillons environnementaux incluant : l'exercice d'analyses et quantifications PCR (réaction de polymérisation en chaîne), la microscopie en fluorescence in situ Hybridization de l'ARN 16S (FISH), le séquençage à haut débit d’amplicons pour analyser la diversité phylogénétique et fonctionnelle des communautés, ainsi que le séquençage métagénomique (shotgun sequencing).
Le laboratoire en écotoxicogénomique et perturbation endocrinienne (LEPE) regroupe l’expertise, les connaissances, l’infrastructure et l’instrumentation nécessaires pour tester les effets des contaminants sur la santé des organismes vivants. Les expériences se font en laboratoire, en microcosme, en mésocosme et sur le terrain. L’équipe développe des biomarqueurs uniques pour chaque espèce visée afin de comprendre et valider les mécanismes d’action des contaminants. Le groupe est également spécialisé dans l’étude des perturbateurs endocriniens et possède, entre autres, des lignées cellulaires ultra-sensibles qui permettent d’identifier les contaminants capables d’altérer la réponse hormonale.
Le laboratoire BioEngine dans le département de génie chimique de l’Université Laval comporte des équipements et pilotes haut de gamme pour la récupération de ressources à partir des matières résiduelles et des eaux polluées. On y trouve notamment des réacteurs de potentiel méthanogène (BMP), des réacteurs semi-continus de biométhanisation en 1, 2 ou 3 phases, des réacteurs de compostage et conditionnement aérobie contrôlé, un granulateur à lit fluidisé, un pilote de récupération de phosphore par adsorption, un montage de récupération d’azote par stripping et absorption, un bioréacteur à membranes, un station de mesure pour le suivi des paramètres physicochimiques et biologiques à temps réel, ainsi que des équipements pour la caractérisation des eaux et des matières organiques résiduelles.
Ces laboratoires permettent d’analyser des échantillons d’eau par colorimétrie, fluorométrie, spectroscopie, radioisotopie et chromatographie, ainsi que d’analyser les composés organiques et les métaux traces présents dans différentes matrices (eau, effluents, boues d’épuration, sols, sédiments, tissus biologiques), et enfin, d’analyser les éléments présents dans des échantillons solides (roches, sols, sédiments, boues). Scanographie par microfluorescence X : Analyses non destructives par radiographie couplées à l’analyse chimique par microfluorescence X de roches, de sols et de sédiments. Microscopie électronique à balayage : Production d’images en haute résolution de la surface et de la composition d’un échantillon à l’aide d’une technologie utilisant les interactions électrons-matière.
Le service est en mesure de répondre à plusieurs besoins dans les domaines animal, végétal ou microbien, notamment :
• Recherche et identification de virus de toutes provenances ;
• Recherche et identification (Gram positif ou Gram négatif) et description de bactéries de toutes provenances
• Recherche et identification de contaminants (ex. : mycoplasmes) dans des échantillons cliniques ou des cultures cellulaires
• Immuno-électromicroscopie avec ou sans or colloïdal sur un échantillon liquide (coloration négative) ou sur des coupes cellulaires (techniques de pré- ou de post-enrobage)
• Contrôle de qualité de fractions virales de gradients de densité
• Morphologie cellulaire sur coupes minces
• Quantification de virus (ex. : Retrovirus) à l'aide de sphères de latex à concentration connue par coloration négative.
• Contrôle de qualité des produits biologiques rejetés à l'égoût municipal
• Recherche de Retrovirus dans des cellules, identification et compte de la proportion des cellules (coupes cellulaires) infectées
/// Caractéristiques:
- Permet de tester plusieurs conditions de floculation / préfiltration simultanément
Le service de spectrométrie de masse est offert à la communauté scientifique. Il se consacre notamment à l’identification de molécules organiques, l’analyse de produits naturels, la quantification de métabolites de produits pharmaceutiques, l’analyse de polluants à l’état de traces, la détermination du poids moléculaire de protéines, le séquençage de peptides. Le service est entre autres équipé d’un triple quadrupole Quattro II de Micromass équipé d’interfaces de chromatographie gazeuse et liquide. Il peut opérer en mode positif et négatif et procéder à un balayage de masses jusqu’à 4000 m/z. Le service de spectrométrie de masse peut réaliser une variété d’expériences de MS/MS comme l’analyse d’ions filles, d’ions parents et de perte de fragments neutres. Il utilise divers modes d’ionisation comme l'impact électronique (EI), l’ionisation chimique (CI), l’ionisation chimique à pression atmosphérique (APCI), l’electrospray et le nanospray. Il possède une interface pour la chromatographie gazeuse avec un chromatographe en phase gazeuse HP 6890 ainsi qu’une interface pour chromatographie liquide avec un HPLC HP 1100 équipé d’un injecteur automatique et d’un détecteur UV.
Coûts : 60 $/analyse
/// Exemples d’application:
- Séparer et concentrer des nanoparticules métalliques
/// Caractéristiques:
- Volumes de traitement de 1 à 4 L
- Pression d’opération pouvant aller jusqu’à 600 psi
- Débit d’alimentation allatn de 1L/min à 6L/min
- Coupons de membranes pour faire de la MF, UF, NF et OI
- Adaptable pour l’osmose directe
/// Échantillons:
- Liquides : effluents, liquides résiduels, eaux de procédés, fluides, etc.
/// Exemples d’application:
- Balayage et sélection du type de membrane à utilise
- Optimisation des paramètres de filtration membranaire : débits, pressions, températures
- Études de différents effets sur les liquides et membranes (précipitations, colmatage, perte de charge, etc.)
