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Bioréacteurs de 700 litres (500 litres de capacité pour la mise à l’échelle de bioprocédés, avec capacité de pressurisation de 5 bars, unique au Québec)


/// Caractéristiques: - Bioréacteur de 700 L avec 500 L de volume de travail - Cuves d’adjonction de liquide (base, acide, antimousse, alimentation en substrat) - Possibilité de travailler en mode discontinu (batch), discontinu alimenté (fed-batch) et continu - Capacité de pressurisation de la cuve jusqu’à 5 bars (unique au Québec) - Système de contrôle automatisé - Mise à l’échelle de bioprocédés /// Exemples d’application: - Mise à l’échelle de bioprocédés fermentaires aérobies / anaérobies - Mise à l’échelle de procédés de production d’algues hétérotrophes - Étude d’amélioration du taux de transfert d’oxygène par pressurisation - Études technico-économiques pour analyse de la rentabilité d’un bioprocédé - Production de nanoparticules métalliques par des microorganismes

Établissement
  • Cégep de Shawinigan
Lieu
CNETE (Shawinigan)
Personne contact
Mohamed Rahni, Chercheur
mrahni@cnete.qc.ca, 819-539-8508
Axe associé :
  • Axe Usages de l'eau
    Thématique 1 : Besoins et usages de l’eau des villes
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Broyeur industriel


/// Caractéristiques: - Réduction de la taille des intrants et préparation des échantillons

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  • Cégep de Shawinigan
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CNETE (Shawinigan)
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    Thématique 1 : Besoins et usages de l’eau des villes
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Densitomètre pour gel d’électrophorèse


/// Caractéristiques: - Système Gel Doc XR+ permettant une visualisation haute résolution (caméra 4 MP) - Imagerie UV ou VIS selon type de gel ou échantillon (3 modes, trans-UV, trans white, epi-white) - Facile d’utilisation et logiciel simple et efficace - Logiciel d’imagerie, d’analyse du poids moléculaire ou de densitométrie ///Exemples d’application: - Analyse d’un gel d’électrophorèse de protéines (SDS-PAGE) (Photo, densito, mW) - Analyse d’un gel d’électrophorèse d’ADN ou ARN sur agarose (Photo, densito, mW) - Photo de colonies bactériennes sur géloses (Photo, densito, mW) - Photo de halo d’inhibition sur pétri ou autre

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  • Cégep de Shawinigan
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Digesteur anaérobie de 4 500 litres


/// Caractéristiques: - 1 digesteur de 4500 L, avec volume de travail utile de 4000L - 1 cuve de prétraitement / stockage de 1500 L pour alimentation du digesteur - Alimentation du digesteur programmée par automate, sur 24h, en continu -Agitation des 2 cuves avec pompe Netschz à cavité progressive, reliées à l’automate - Débit d’alimentation variable allant de 50 L/min à 500 L/min - Complètement étanches, en acier inoxydable - Entrée et sortie de 4 pouces avec valves pneumatiques pour intrants et rejet du digestat - Chauffage par serpentin double paroi, allant de 21°C à 70 °C - Sortie de gaz vers une torchère, avec mesure de débit et collecte des gaz pour analyse - Analyse qualitative du biogaz (O2, N2, CO2, CH4, H2S) avec analyseur portatif Sewerin Multitec 540 /// Exemples d’application: - Développement de procédés à échelle pilote, en continu (Fed-batch) - Optimisation de paramètres mécaniques de production de méthane (OLR, HRT) - Optimisation de paramètres physico-chimiques de production de méthane (pH, T°C, etc…) - Tests de toxicité et d’inhibition de certains intrants /co-intrants - Évaluation de la production de biogaz avec intrant prétraité (enzymatique/thermique/chimique)

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  • Cégep de Shawinigan
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Digesteurs anaérobie (biométhaniseur) de 300 litres


/// Caractéristiques: - 2 digesteurs de 300L, avec volume de travail utile de 200L - 2 cuves de prétraitement / stockage de 300L pour alimentation des digesteurs - Alimentation des digesteurs programmée par automate, sur 24h, en continu - Agitation des 4 cuves avec pompes à «impeller», reliées à l’automate - Débit d’alimentation variable allant de 5 L/min à 50 L/min - Complètement étanches, en acier inoxydable - Entrée et sortie de 2 pouces avec valves pour intrants et rejet du digestat - Sortie de gaz pour collecte des gaz en sac Tedlar, et septum pour analyse GC-TCD - Analyse du biogaz par GC-TCD (N2, O2, CO2, CH4) et FTIR (H2S) - Chauffage par serpentin double paroi, allant de 21°C à 60 °C - Possibilité de tester des membranes de purification des gaz à la sortie des 2 digesteurs /// Exemples d’application: - Développement de procédés à échelle pré-pilote, en continu (Fed-batch) - Optimisation de paramètres mécaniques de production de méthane (OLR, HRT) - Optimisation de paramètres physico-chimiques de production de méthane (pH, T°C, etc…) - Tests de toxicité et d’inhibition de certains intrants /co-intrants à long terme - Évaluation de la production de biogaz avec intrant prétraité (enzymatique/thermique/chimique)

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Digesteurs anaérobie de 7 litres


/// Caractéristiques: - 6 digesteurs de 7L, avec volume de travail utile de 5L - Agitation mécanique avec pales, à vitesse fixe de ~ 40 RPM - Complètement étanches, en acier inoxydable - Entrée et sortie de 2 pouces avec valves pour intrants et rejets - Sortie de gaz pour collecte des gaz en sac Tedlar, et septum pour analyse GC-TCD - Analyse du biogaz par GC-TCD (N2, O2, CO2, CH4) et FTIR (H2S) - Incubation en bain thermostaté ou réfrigéré, allant de 4°C à 55 °C /// Exemples d’application: - Entretiens d’inoculum de méthanogènes pour les tests de potentiel méthane (BMP) - Développement de procédés à échelle laboratoire, en continu (Fed-batch) - Optimisation de paramètres mécaniques de production de méthane (OLR, HRT) - Optimisation de paramètres physico-chimiques de production de méthane (pH, T°C, etc…) - Tests de toxicité et d’inhibition de certains intrants /co-intrants

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Incubateurs à agitation orbitale (grande capacité)


/// Exemples d’application: - Tests préliminaires de fermentation (production de biomolécules ou biomasses) - Développement de précultures pour inoculer des bioréacteurs - Tests de potentiel de biométhanisation - Tests de criblage de microorganismes (sauvages ou recombinants); screening tests - Tests d’évaluation de milieux de culture microbiens

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Lecteur à microplaque (absorbance, fluorescence et bioluminescence)


/// Caractéristiques: - Lecteur à microplaque mesurant l’absorbance, la fluorescence ou la luminescence - Incubation jusqu’à 60°C - Possibilité de maintenir la chambre de lecture sous 5 % de CO2 - Un injecteur à seringue intégré pour délivrer un substrat, un inhibiteur, une enzyme, etc. - Possibilité de lecture en continu à chaque 20 millisecondes jusqu’à plusieurs heures - Possibilité de lire au-dessus ou au-dessous de chaque puits - Possibilité de lecture en mode excitation et en mode émission de façon simultanée - Lecture spectrale de 240 à 900 nm (selon les filtres disponibles) - Contrôle intégré à l’aide d’un logiciel complet /// Échantillons: -Liquide - Analyse en microplaque de 6 à 384 puits - Ajout de liquide de 5 à 350 µL (par incrément de 0.5 µL) à l’aide de l’injecteur /// Exemples d’application: - Dosage de réaction enzymatique en mode discontinu ou continu - Dosage pour des tests de cytotoxicité, de prolifération et de viabilité cellulaire - Dosage de la teneur en algues cultivées dans des bioréacteurs - Dosage de l’ATP dans des extraits cellulaires - Réalisation de tests ELISA, immuno-essais - Réalisation de tests antioxydants - Dosage de composés phosphorescents

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Microscope Optique


/// Exemples d’application: - Microscopie conventionnelle avec caméra HD d’enregistrement.

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PCR à gradient et Q-PCR (plate-forme de biologie moléculaire)


/// Caractéristiques: - Bloc et couvercle avec chauffages/refroidissement ultra rapides (PCR et qPCR) - Programmation de temperature indépendante en gradient, sur 12 colonnes (PCR et qPCR) - Gamme de gradient sur plus de 20°C (PCR et qPCR), allant de 4 à 99°C - Technologie vapo.protect pour réduire l’évaporation des puits (qPCR) - Lumières DEL génèrent du bleu à 470 nm excitant les fluorophores (SYBR®Green, FAM, VIC, TET, HEX, ROX, JOE, TAMRA) (qPCR) - Possibilité de choisir des amorces de type Taqman, Beacon et SYBR (qPCR) - Logiciel de suivi d’amplification de l’ADN en continu et d’analyse post-amplification (qPCR) /// Exemples d’application: - Amplification de gènes cibles chez différents microorganismes (PCR) - Détection et quantification de gènes cibles (ex. protéines, enzyme) de différents microorganismes (qPCR) - Suivi (monitoring) de populations bactériennes dans un bioprocédé (qPCR) - Suivi de l’expression de gènes par l’ARNm et de la variation génotypique - Optimisation de conditions de procédés par la détection (présence/absence) de pathogènes

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